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2024-07-29 作者:

上海农业学报2014,30(1):5—8 Acta Agriculturae Shanghai 文章编号:1000.3924(2【J14)01.005—04 繁殖候选基因Lhx8的真核表达和定位分析 王晶晶 ,潘雪男 ,何晓芳 ,毛 慧 ,王荣谈 ( 上海市农业科学院畜牧兽医研究所,上海201106; 上海瑞丰农业科技有限公司,上海201106) 摘要:从猪卵巢组织中提取总RNA为模板,采用RT—PCR方法获得了猪Lhx8基因的完整开放阅读框, 将该基因克隆到真核表达载体pEGFP—N1中,经酶切分析和测序证明成功构建了真核重组质粒pEGFP—N1一 Lhx8。将成功构建的pEGFP—N1一Lhx8分别转染猪肾细胞PK 15和猪颗粒细胞(GCs),转染后48 h,通过荧光 显微镜观察对猪Lhx8基因在这2种细胞中的定位特点进行分析。结果显示:绿色荧光呈点状分布,根据绿色荧 光分布的位置,推测Lhx8蛋白很可能位于细胞核中。 关键词:猪;Lhx8基因;真核表达;定位分析 中图分类号:S813.3 文献标识码:A The eukaryotic expression and localization analysis of reproductive candidate gene Lhx8 WANG Jing—jing ,PAN Xue-nan ,HE Xiao—fang ,MAO Hui ,WANG Rong-tan ( Animal Husbandry and Veterinary Research Institute,Shanghai Academy of Agricultural Sciences, Shanghai 20 1 1 06,China;。Shanghai Ruifeng Agricultural Technology Company Limited, Shanghai 201 106,China) Abstract:The total RNA extracted from a porcine ovary was used as a templet,and the full open reading frame(0RF)of porcine Lhx 8 gene was obtained by RT.PCR.The full 0RF of Lhx 8 was cloned into pEGFP.N1 vector,and the recombinant plasmid PEGFP—N1.Lh 8 was constructed and confirmed by restriction analysis and sequencing.The recombinant plasmid was transfected into PK.15 cells and porcine granulosa cells(GCs)respectively.At 48 h after transfection.the localization of Lhx8 protein in the two kinds of cells was analyzed bv fluorescent microscope.The results showed that the green fluorescence assumed spot distribution.According to the location of the green fluorescence,the Lhx8 protein was probably in the nucleus. Key words:Lhx 8 gene;Eukaryotic expression;Localization analysis Lhx8是LIM同源盒基因家族中的一员,又称L3,含有2个保守的功能结构域——LIM结构域和同 源结构域,可能通过蛋白-蛋白之间的相互作用和转录调控参与细胞分化和器官发育等重要生理过程 ]。 通过氨基酸多序列比对分析发现,人Lhx8基因与鼠Lhx8基因所编码的蛋白质序列相似性高达80%_2]。 Lhx8基因最早报道与小鼠的腭裂密切相关l_3],但之后的研究发现,Lhx8基因是LIM同源盒基因家 族中第一个在性腺组织表达的基因,在生殖细胞中具有较高的表达,与卵母细胞特异性表达调控因子有 密切的关系,对动物的卵巢发育和机能维持发挥着关键调控作用 一73。研究表明:Lhx8在小鼠上的表达 开始很早,在13.5 d的小鼠胚胎中就可检测到Lhx8[s]。在成年小鼠卵巢中,Lhx8在原始卵泡、初级卵泡 以及窦状卵泡中均有表达。将Lhx8基因敲除后,发现成年雌性小鼠的卵巢中缺乏生殖细胞,卵母细胞数 量大大减少,并且卵泡退化 ]。Choi Y等 研究发现,敲除Lhx8基因后,刚出生的小鼠卵巢与正常小鼠 一样,但组织学分析发现,在基因敲除小鼠的卵巢中,原始卵泡不能保持生长,且不能向生长卵泡转化。 收稿日期:2013—06—29 作者简介:王晶晶(1982一),女,博士,助理研究员,研究方向:猪的遗传育种与繁殖。E-mail:shzyq—wangjj@yeah.net *通讯作者 6 王晶晶,等:繁殖候选基因Lhx8的真核表达和定位分析 芯片结果表明:Lhx8基因的缺失引起减数分裂关键因子Dmc1、Msh5、Spo11、Rec8、Sycp3等基因的下 调,导致卵母细胞的分化受阻。此外,敲除Lhx8基因后,Nobox、GDF9、Pou5fl、Zp1、Zp3等卵母细胞 特异性基因在卵巢中的表达水平急剧减少或不表达。这说明Lhx8基因在卵子发生的早期阶段对于卵母 细胞的分化和存活至关重要。Zhang等 研究发现,Lhx8的表达与小鼠原始卵泡的激活密切相关。Lim 等 综述对维持原始卵泡存活发挥重要作用的转录因子时也重点提到了Lhx8基因。当利用马利兰和环 磷酰胺进行化学疗法时,发现Lhx8等基因的表达显著下降,卵巢生殖细胞减少,增加了卵巢功能早衰的 危险 。 2009年,Fang等 克隆了猪的Lhx8基因,并发现Lhx8基因在性腺、脑组织、免疫组织和骨骼肌中 表达,推测Lhx8是影响猪繁殖性状的一个重要候选基因。通过生物信息学预测猪的Lhx8蛋白定位于 细胞核中。本研究通过试验对Lhx8蛋白的定位进行了初步的验证分析,以期为进一步研究猪Lhx8基 因的功能奠定基础。 1 材料与方法 1.1菌株、载体及试剂 Trizol、LipofectamineTM 2000、无内毒质粒提取试剂盒购自Invitrogen公司,M-MLV Reverse Transcriptase、Oligo dT、dNTP Mixture、RNase inhibitor购自Promega公司,pEGFP-N 1、限制性内切酶 Xho I和BamHI、T4 DNA连接酶购自Takara公司,DNA marker、LA Taq PCR Master Mix、TOPIO感 受态细胞、DNA纯化试剂盒、质粒提取试剂盒购自南京天根生物技术有限公司,DMEM/F1 2培养液、胰 酶购自GIBCO公司,其他常用试剂均为国产分析纯。 1.2引物设计与合成 根据GenBank中公布的猪Lhx8基因的序列,利用Primer 5软件分别设计扩增部分cDNA(Lhx8一 F/R)和ORF(用于构建真核表达载体,Lhx8一N1.F/R)的引物,引物由上海英俊公司合成,序列见表1。 表1用于扩增Lhx8基因的引物序列 Table l Sequences of primers used for Lhx8 gene amplification 1.3 Lhx8基因的扩增及测序 采集猪的卵巢组织,根据Invitrogen公司提供的RNA提取方法,利用Trizol提取总RNA。依据 Promega公司的反转录方法合成cDNA。利用引物Lhx8一F/R扩增Lhx8的cDNA,PCR反应体系: cDNA 1 FL,2×LA Buffer 25 FL,2.5 mmol/L dNTP 4 L,LA Taq DNA聚合酶0.5/*L,10/ ̄mol/L 上下游引物各1 FL,ddH O补齐50 FL。反应程序:94℃3 min;94℃30 S、58℃30 S、72℃70 S,35 个循环;最后72℃7 min。PCR结束后,取5 L产物,用1.0%琼脂糖凝胶电泳检测。 1.4真核表达质粒的构建、鉴定及提取 以1.3中获得的PCR产物为模板,利用Lhx8.N1.F/R引物,扩增Lhx8完整的ORF,获得888 bp的 DNA片段,回收后将DNA片段和pEGFP.NI经Xho I和BarnHI双酶切后再回收,利用T4 DNA连接 酶将DNA片段和线性pEGFP.N1连接,然后转化于TOP10感受态,采用氨苄抗性筛选获得的质粒经双 酶切鉴定后,将阳性质粒命名为pEGFP.N1.Lhx8并进行测序。利用无内毒质粒提取试剂盒提取 pEGFP.N1.Lhx8,测定质粒浓度后于一8O℃保存备用。 1.5细胞培养、转染及观察 采新鲜猪卵巢,抽取卵泡中的颗粒细胞(OCs),用磷酸盐缓冲液(PBS)清洗2次,用含1()%胎牛血清 的DMEM/F12培养液在37℃、5%CO:培养箱内培养,利用0.25%胰酶消化传代[1 。猪肾细胞(PK. 1 5)的培养条件与GCs相同。将GCs和PK一1 5分别接种于6孔板,设空白组、阴性对照组、pEGFP—N1. Lhx8转染组,待细胞达到80%~9O%融合时,按Lipofectamine 2000试剂说明进行转染,48 h后在荧 光显微镜下观察。 

本文标签: 繁殖候选基因Lhx8的真核表达和定位分析